小動物麻醉機(jī)作為實驗動物手術(shù)的核心設(shè)備，其操作規(guī)范直接關(guān)系到動物福利與實驗數(shù)據(jù)可靠性。本文基于多場景實操經(jīng)驗，系統(tǒng)梳理該設(shè)備的標(biāo)準(zhǔn)化操作流程，為科研人員提供可復(fù)制的技術(shù)參考。

　　一、術(shù)前準(zhǔn)備：安全與功能的雙重校驗

　　1.設(shè)備環(huán)境檢查

　　將小動物麻醉機(jī)置于通風(fēng)良好的實驗臺，避免陽光直射。檢查氧氣瓶壓力≥0.3MPa，確認(rèn)蒸發(fā)器密封圈無老化，氣路連接無松動。例如，天津醫(yī)科大學(xué)實驗動物科學(xué)部要求氧氣輸出壓力嚴(yán)格控制在0.2-0.3MPa，壓力過高易導(dǎo)致管路塌陷，過低則影響供氣穩(wěn)定性。

　　2.麻醉劑加注

　　使用專用加藥適配器向蒸發(fā)器注入C?H?ClF?O，液面需位于上下刻度線之間。若不慎灑落，需自然揮發(fā)后用干布擦拭，避免腐蝕蒸發(fā)器表面鍍層。建議每周清理蒸發(fā)器注入口毛發(fā)殘留，防止氣路堵塞。

　　3.動物預(yù)處理

　　實施麻醉前8-12小時禁食，降低嘔吐風(fēng)險。對大鼠等應(yīng)激敏感動物，可注射0.05mg/kg乙酰丙嗪預(yù)麻，減少麻醉劑用量30%以上。

　　二、術(shù)中操作：精準(zhǔn)調(diào)控麻醉深度

　　1.誘導(dǎo)麻醉階段

　　將動物置于誘導(dǎo)盒，氧氣流量調(diào)至3L/min，蒸發(fā)器刻度設(shè)為2.5%-3%。觀察動物出現(xiàn)眼瞼反射消失、肌肉松弛等體征后，立即切換至維持麻醉模式。睦科生物實測數(shù)據(jù)顯示，小鼠誘導(dǎo)時間約90秒，大鼠需120-150秒。

　　2.維持麻醉參數(shù)

　　根據(jù)動物體重動態(tài)調(diào)整：

　?、傩∈螅?0-30g）：氧氣流量0.2-0.4L/min，麻醉濃度1%-1.5%

　?、诖笫螅?00-300g）：氧氣流量0.4-0.6L/min，麻醉濃度2%-2.5%

　　持續(xù)監(jiān)測血氧飽和度（SpO?≥95%）與呼吸頻率（小鼠60-80次/分，大鼠40-60次/分），每15分鐘記錄一次生命體征。

　　3.氣道管理要點

　　氣管插管后需確認(rèn)胸廓起伏同步，APL閥壓力維持在1.5-2.0kPa。若使用無創(chuàng)面罩麻醉，需每30分鐘檢查面罩密封性，防止漏氣導(dǎo)致麻醉深度波動。

　　三、術(shù)后恢復(fù)與設(shè)備維護(hù)

　　1.蘇醒期管理

　　手術(shù)結(jié)束后，逐步將蒸發(fā)器刻度歸零，氧氣流量增至2L/min沖洗氣道。待動物恢復(fù)自主呼吸后，轉(zhuǎn)移至30℃恒溫復(fù)蘇箱，持續(xù)監(jiān)測至全部清醒。

　　2.設(shè)備清潔流程

　　拆卸誘導(dǎo)盒與面罩，用75%乙醇浸泡消毒30分鐘

　　清理蒸發(fā)器表面毛發(fā)，檢查活性炭罐重量（小號≥300g需更換）

　　每周執(zhí)行深度維護(hù)：用硅膠管排空蒸發(fā)器殘留麻醉劑，通風(fēng)櫥內(nèi)自然揮發(fā)廢液

　　3.年度校準(zhǔn)要求

　　聯(lián)系專業(yè)機(jī)構(gòu)檢測氧氣流量計精度（誤差≤±5%）、蒸發(fā)器濃度輸出穩(wěn)定性（CV≤3%）。建立設(shè)備使用檔案，記錄每次麻醉的動物種類、參數(shù)設(shè)置及異常情況。
 

　　結(jié)語

　　KW-MZJ小動物麻醉機(jī)的規(guī)范操作需貫穿"準(zhǔn)備-實施-維護(hù)"全周期。通過標(biāo)準(zhǔn)化流程管理，可顯著降低動物麻醉相關(guān)死亡率（實測數(shù)據(jù)<0.5%），同時延長設(shè)備使用壽命至8年以上?？蒲腥藛T應(yīng)定期參加實操培訓(xùn)，掌握應(yīng)急處理技能，如氣道梗阻急救、麻醉過量復(fù)蘇等，為實驗動物提供更安全的醫(yī)療保障。